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(2S,4R)-2,4-dimethylhexane-1,5-diol | 1253642-72-6

中文名称
——
中文别名
——
英文名称
(2S,4R)-2,4-dimethylhexane-1,5-diol
英文别名
——
(2S,4R)-2,4-dimethylhexane-1,5-diol化学式
CAS
1253642-72-6
化学式
C8H18O2
mdl
——
分子量
146.23
InChiKey
XTYRJOKNCLJXJF-KJFJCRTCSA-N
BEILSTEIN
——
EINECS
——
  • 物化性质
  • 计算性质
  • ADMET
  • 安全信息
  • SDS
  • 制备方法与用途
  • 上下游信息
  • 反应信息
  • 文献信息
  • 表征谱图
  • 同类化合物
  • 相关功能分类
  • 相关结构分类

物化性质

  • 沸点:
    234.8±8.0 °C(Predicted)
  • 密度:
    0.932±0.06 g/cm3(Predicted)

计算性质

  • 辛醇/水分配系数(LogP):
    1.02
  • 重原子数:
    10.0
  • 可旋转键数:
    4.0
  • 环数:
    0.0
  • sp3杂化的碳原子比例:
    1.0
  • 拓扑面积:
    40.46
  • 氢给体数:
    2.0
  • 氢受体数:
    2.0

上下游信息

  • 上游原料
    中文名称 英文名称 CAS号 化学式 分子量

反应信息

  • 作为反应物:
    参考文献:
    名称:
    鉴定工程化聚酮化合物生物合成中的关键瓶颈。
    摘要:
    组合生物合成的概念有望访问基于特权天然支架的化合物文库。自从1990年阐明向抗生素红霉素A的生物合成途径以来,一直在研究可预测的I型聚酮化合物合酶大酶的操作。但是,除了简化的模型系统之外,很少达到此目标。在这项研究中,我们使用靶向代谢组学方法鉴定了聚醚莫能菌素和许多突变变体的生物合成中间体。我们调查了中间体的生物合成流,并使用实验装置揭示了聚酮化合物合酶中选择性过滤器的存在。这些阻碍了酶促组装线中非天然中间体的加工。因此,我们质疑聚酮化合物合酶的真正模块化组织的概念,并强调了沿级联通道的底物通道中的障碍。在寻找选择性过滤器的分子起源时,我们研究了莫能菌素基因簇中不同硫酯酶的作用以及酮合成酶序列基序与传入底物结构之间的联系。此外,我们证明了选择性过滤器不适用于新生的聚酮化合物中的新到自然的侧链,这表明对它们的接受通常不受下游模块的限制。我们研究了莫能菌素基因簇中不同硫酯酶的作用以及酮合酶序列
    DOI:
    10.1039/c9ob00831d
  • 作为产物:
    参考文献:
    名称:
    碘霉素的形式合成中酸酐的催化烷基化不对称化
    摘要:
    献给斯科特教授丹麦在他65之际个生日。 发布时间为致力于斯科特E.丹麦在他65之际特殊部分的部分次生日。 抽象的 用锌试剂对酸酐进行催化脱对称可提供脱氧聚丙酸酯和聚丙酸酯合成子的途径。进行离子霉素的合成,其中使用这种方法将四个片段中的三个组装在一起。两种策略(烯醇硅烷/氧碳鎓偶联和还原环化)均未成功安装C23立体中心,但通过还原/ S N 2方法克服了该立体化学问题。除了合成离子霉素的受保护的非对映异构体之外,C17–C32片段的合成还构成正式的总合成。 用锌试剂对酸酐进行催化脱对称可提供脱氧聚丙酸酯和聚丙酸酯合成子的途径。进行离子霉素的合成,其中使用这种方法将四个片段中的三个组装在一起。两种策略(烯醇硅烷/氧碳鎓偶联和还原环化)均未成功安装C23立体中心,但通过还原/ S N 2方法克服了该立体化学问题。除了合成离子霉素的受保护的非对映异构体之外,C17–C32片段的合成还构成正式的总合成。
    DOI:
    10.1055/s-0037-1610108
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文献信息

  • Mechanism and Stereospecificity of a Fully Saturating Polyketide Synthase Module: Nanchangmycin Synthase Module 2 and Its Dehydratase Domain
    作者:Xun Guo、Tiangang Liu、Chiara R. Valenzano、Zixin Deng、David E. Cane
    DOI:10.1021/ja1073432
    日期:2010.10.27
    Recombinant nanchangmycin synthase module 2 (NANS module 2), with the thioesterase domain from the 6-deoxyerythronolide B synthase (DEBS TE) appended to the C-terminus, was cloned and expressed in Escherichia coli. Incubation of NANS module 2+TE with (+/-)-2-methyl-3-keto-butyryl-N-acetylcysteamine thioester (1), the SNAC analog of the natural ACP-bound substrate, with methylmalonyl-CoA (MM-CoA) in the absence of NADPH gave 3,5,6-trimethy1-4-hydroxypyrone (2), identified by direct comparison with synthetic 2 by radio-TLC-phosphorimaging and LC-ESI(+)-MS-MS. The reaction showed K(cat) 0.5 +/- 0.1 min(-1) and K(m)(1) 19 +/- 5 mM at 0.5 mM MM-CoA and k(cat)(app) 0.26 +/- 0.02 min(-1) and K(m)(MM-CoA) 0.11 +/- 0.02 mM at 8 mM 1. Incubation in the presence of NADPH generated the fully saturated triketide chain elongation product as a 5:3 mixture of (2S,4R)-2,4-dimethy1-5-ketohexanoic acid (3a) and the diastereomeric (2S, 4S)-3b. The structure and stereochemistry of each product was established by comparison with synthetic 3a and 3b by a combination of radio-TLC-phosphorimaging and LC-ESI(-)-MS-MS, as well as chiral capillary GC-MS analysis of the corresponding methyl esters 3a-Me and 3b-Me. The recombinant dehydratase domain from NANS module 2, NANS DH2, was shown to catalyze the formation of an (E)-double bond by syndehydration of the ACP-bound substrate anti-(2R,3R,4S,5R)-2,4-dimethyl-3,5-dihydroxyheptanoyl-ACP6 (4), generated in situ by incubation of (2S,3R)-2-methyl-3-hydroxypentanoyl-SNAC (5), methylmalonyl-CoA, and NADPH with the recombinant [KS6][AT6] didomain and ACP6 from DEBS module 6 along with the ketoreductase from the tylactone synthase module 1 (TYLS KR1). These results also indirectly establish the stereochemistry of the reactions catalyzed by the KR and enoylreductase (ER) domains of NANS module 2.
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