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[(benzyloxy)carbonyl]-L-phenylalanyl-L-cysteine

中文名称
——
中文别名
——
英文名称
[(benzyloxy)carbonyl]-L-phenylalanyl-L-cysteine
英文别名
Cbz-L-Phe-L-Cys;Cbz-L-Phe-L-Cys-OH;(2R)-2-[[(2S)-3-phenyl-2-(phenylmethoxycarbonylamino)propanoyl]amino]-3-sulfanylpropanoic acid
[(benzyloxy)carbonyl]-L-phenylalanyl-L-cysteine化学式
CAS
——
化学式
C20H22N2O5S
mdl
——
分子量
402.471
InChiKey
MHXWEOIHEUTBJP-IRXDYDNUSA-N
BEILSTEIN
——
EINECS
——
  • 物化性质
  • 计算性质
  • ADMET
  • 安全信息
  • SDS
  • 制备方法与用途
  • 上下游信息
  • 反应信息
  • 文献信息
  • 表征谱图
  • 同类化合物
  • 相关功能分类
  • 相关结构分类

计算性质

  • 辛醇/水分配系数(LogP):
    1.7
  • 重原子数:
    28
  • 可旋转键数:
    10
  • 环数:
    2.0
  • sp3杂化的碳原子比例:
    0.25
  • 拓扑面积:
    106
  • 氢给体数:
    4
  • 氢受体数:
    6

上下游信息

  • 上游原料
    中文名称 英文名称 CAS号 化学式 分子量

反应信息

  • 作为反应物:
    描述:
    [(benzyloxy)carbonyl]-L-phenylalanyl-L-cysteine氯化亚砜三乙胺 作用下, 以 四氢呋喃乙腈 为溶剂, 反应 6.33h, 生成 N-Cbz-L-Phe-L-Cys-L-Phe-OH
    参考文献:
    名称:
    半胱氨酸和半胱氨酸的带有游离巯基的二肽基苯并三唑:易于获得N末端和内部的半胱氨酸肽
    摘要:
    通过用1-(苄氧羰基)苯并三唑(Cbz-Bt)1a,N-(叔丁氧羰基)处理l-半胱氨酸,可以制备70-75%产率的N-保护半胱氨酸的每个带有一个巯基的半胱氨酸。苯并三唑(Boc-Bt)1b和1-(9-芴基甲氧基-羰基)苯并三唑(Fmoc-Bt)1c。N-保护的,游离的巯半胱氨酸4a-c中然后转化成相应的N-保护的,游离的巯cysteinoylbenzotriazoles 7A-C(70-85%),其上具有不同氨基酸的二肽和治疗得到相应的N -保护的游离巯基N端半胱氨酸二肽8a-e和三肽8f-h,产率为73-80%。将N保护的含游离巯基半胱氨酸的二肽9a,b转化为相应的N保护的游离巯基二肽基苯并三唑10a,b(69-81%),将其用氨基酸,二肽和三肽处理​​后得到内部半胱氨酸三肽11A-C ,四肽11D,è和五肽11F,每个都包含A N -受保护的游离巯基在温和条件下的收率为70-90%。用
    DOI:
    10.1111/j.1747-0285.2011.01303.x
  • 作为产物:
    参考文献:
    名称:
    Hexafluoro-2-propanol as a potent cosolvent for chemical ligation of membrane proteins
    摘要:
    膜蛋白的研究是一项重要挑战,这主要是因为它们在各种溶剂中的溶解性极差。传统的重组表达策略和天然化学连接方法都难以高效地产生足够数量的所需蛋白质。先前的研究表明,多氟化醇具有良好的难溶肽段溶解能力,尤其是六氟-2-丙醇(HFIP)。在本研究中,我们系统地研究了含有不同比例HFIP的溶剂对跨膜肽溶解能力的系统研究。通过HPLC和UV分析,我们得出结论,60% HFIP/8 M urea构成了一种良好的溶剂体系。在此溶剂体系中,我们还优化了进行天然化学连接(NCL)的条件。在优化的条件下,我们成功实现了二肽形成和模型蛋白质(Trifolitoxin)合成的NCL。这些结果表明,HFIP是一种潜在的共溶剂,可用于连接难溶肽段以生成膜蛋白。
    DOI:
    10.1007/s11426-010-4188-4
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文献信息

  • Hexafluoro-2-propanol as a potent cosolvent for chemical ligation of membrane proteins
    作者:Fei Shen、Shan Tang、Lei Liu
    DOI:10.1007/s11426-010-4188-4
    日期:2011.1
    The study on membrane proteins is an important challenge mainly because of their very poor solubility in various solvents. The traditional recombinant expression strategy and the native chemical ligation method both have difficulty in generating sufficient amounts of desired proteins with high efficiency. Previous studies have shown that multiply fluorinated alcohols exhibit good ability to dissolve difficult peptide sequences, especially hexafluoro-2-propanol (HFIP). In the present study we systematically studied the capability of solvents containing different percentage of HFIP in dissolving transmembrane peptides. Through both HPLC and UV analyses we concluded that 60% HFIP/8 M urea constituted a good solvent system. In this solvent system we also optimized conditions to perform native chemical ligation (NCL). Under the optimized conditions we successfully achieved NCL’s for both dipeptide formation and the synthesis of a model protein (Trifolitoxin). These results suggested that HFIP was a potential cosolvent that could be used in the ligation of poorly soluble peptides for the generation of membrane proteins.
    膜蛋白的研究是一项重要挑战,这主要是因为它们在各种溶剂中的溶解性极差。传统的重组表达策略和天然化学连接方法都难以高效地产生足够数量的所需蛋白质。先前的研究表明,多氟化醇具有良好的难溶肽段溶解能力,尤其是六氟-2-丙醇(HFIP)。在本研究中,我们系统地研究了含有不同比例HFIP的溶剂对跨膜肽溶解能力的系统研究。通过HPLC和UV分析,我们得出结论,60% HFIP/8 M urea构成了一种良好的溶剂体系。在此溶剂体系中,我们还优化了进行天然化学连接(NCL)的条件。在优化的条件下,我们成功实现了二肽形成和模型蛋白质(Trifolitoxin)合成的NCL。这些结果表明,HFIP是一种潜在的共溶剂,可用于连接难溶肽段以生成膜蛋白。
  • Peptide coupling of unprotected amino acids through in situ p-nitrophenyl ester formation
    作者:Paul Gagnon、Xicai Huang、Eric Therrien、Jeffrey W. Keillor
    DOI:10.1016/s0040-4039(02)01840-3
    日期:2002.10
    series of dipeptides and tripeptides were prepared via an activation–coupling method involving the in situ formation of a p-nitrophenyl ester of an (N-protected) amino acid, followed by coupling with an unprotected amino acid in partially aqueous solutions. The resulting peptide is easily isolated by precipitation. In general, the yields obtained are good to excellent and racemization is minimal. This
    通过活化偶联方法制备了一系列的二肽和三肽,该方法包括原位形成(N保护的)氨基酸的对硝基苯基酯,然后在部分水溶液中与未保护的氨基酸偶联。容易通过沉淀分离得到的肽。通常,所获得的收率良好至极好,外消旋化作用极小。就其简单性和缺乏强制性的侧链保护/脱保护步骤而言,该方法是特别有利的。
  • Solution-Phase Synthesis of Chiral N-, O-, and S-Acyl Isopeptides
    作者:Alan Katritzky、Sumaira Liaqat、Siva Panda、Abdul Rauf、Abdulrahman Al-Youbi
    DOI:10.1055/s-0033-1340089
    日期:——
    Abstract A convenient synthesis of chiral N-, O-, and S-acyl monoiso- and diisopeptides from di- and tripeptides containing tryptophan, tyrosine, and cysteine units using benzotriazole is reported in solution phase. A convenient synthesis of chiral N-, O-, and S-acyl monoiso- and diisopeptides from di- and tripeptides containing tryptophan, tyrosine, and cysteine units using benzotriazole is reported
    摘要 据报道,在溶液相中,使用苯并三唑可以方便地从含有色氨酸,酪氨酸和半胱氨酸单元的二肽和三肽合成手性N-,O-和S-酰基单异肽和二异肽。 据报道,在溶液相中,使用苯并三唑可以方便地从含有色氨酸,酪氨酸和半胱氨酸单元的二肽和三肽合成手性N-,O-和S-酰基单异肽和二异肽。
  • Convenient Peptide Synthesis Using Unprotected α-Amino Acids Containing Another Hydrophilic Moiety under Basic Conditions
    作者:Takuya Noguchi、Seunghee Jung、Nobuyuki Imai
    DOI:10.1246/cl.2012.577
    日期:2012.6.5
    Carboxylic acids 1 and 7 reacted effectively with unprotected α-amino acids 2 containing another hydrophilic moiety under basic conditions via activation by ethyl chloroformate and triethylamine to afford the corresponding amides in 74–99% yields.
    在碱性条件下,羧酸 1 和 7 通过氯甲酸乙酯和三乙胺的活化作用,与含有另一个亲水分子的未受保护的 α- 氨基酸 2 发生有效反应,生成相应的酰胺,产率为 74-99%。
  • Solid-Phase Synthesis of 1,3-Azole-Based Peptides and Peptidomimetics
    作者:Eric Biron、Jayanta Chatterjee、Horst Kessler
    DOI:10.1021/ol0607645
    日期:2006.5.1
    [graphics]We report highly efficient two-step procedures for the synthesis of 1,3-oxazole-, thiazole-, and imidazole- containing peptides on solid phase from dipeptides composed of C-terminal threonine, serine, cysteine, or diaminopropionic acid by using different cyclodehydration procedures followed or preceded by oxidation. The methods are compatible with Fmoc solid-phase peptide synthesis conditions and with N-Fmoc, N-Boc, N-Cbz, and N-Alloc protecting groups.
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