N-(tert-butoxycarbonyl)-4[(4’;1’,1”)biphenyl]-L-phenylalanine methyl ester | 643016-66-4

• 分子结构分类: 有机化合物 - 有机酸及其衍生物 - 羧酸及其衍生物
• 英文名称: N-(tert-butoxycarbonyl)-4[(4’;1’,1”)biphenyl]-L-phenylalanine methyl ester
• 英文别名: Boc-(p-terphenyl)alanine methyl ester
• CAS: 643016-66-4
• 化学式: C₂₇H₂₉NO₄
• 分子量: 431.532
• InChiKey: MEOFJSAXEWQIRH-DEOSSOPVSA-N

计算性质

• 辛醇/水分配系数(LogP)：
  5.63
• 重原子数：
  32.0
• 可旋转键数：
  6.0
• 环数：
  3.0
• sp3杂化的碳原子比例：
  0.26
• 拓扑面积：
  64.63
• 氢给体数：
  1.0
• 氢受体数：
  4.0

反应信息

• 作为反应物：
  描述：

  N-(tert-butoxycarbonyl)-4[(4’;1’,1”)biphenyl]-L-phenylalanine methyl ester 在 碳酸氢钠 、 三氟乙酸 、 sodium hydroxide 作用下， 以 四氢呋喃 、 甲醇 、 二氯甲烷 、 水 为溶剂， 反应 0.5h， 生成 Fmoc-(p-terphenyl)alanine
  参考文献：
  名称：

  酪氨酸修饰的α4β7整联蛋白抑制剂生物素-R 8 ERY的酪氨酸修饰类似物的合成和生物学评价

  摘要：

  α4β7整联蛋白是针对各种炎症疾病（包括炎症性肠病，1型糖尿病和多发性硬化症）的药物开发的众所周知的靶标。据报道，基于肽生物素-R 8 ERY的细胞可渗透性β7整联蛋白抑制剂小文库的合成，其中酪氨酸残基已通过Suzuki-Miyaura交叉偶联反应进行了修饰。在细胞粘附测定中评估了合成的拟肽，并显示出其抑制了小鼠TK-1 T细胞与小鼠MAdCAM-1的Mn 2+活化粘附。所有合成的拟肽均比我们先前报道的含生物类似物6和7中的两个类似物的先导化合物生物素-R 8 ERY更具活性。，其IC 50值小于15μM。

  DOI：

  10.1016/j.bmc.2012.07.010
• 作为产物：
  描述：

  L-酪氨酸 在 吡啶 、 四(三苯基膦)钯 、 氯化亚砜 、 potassium carbonate 、 三乙胺 作用下， 以 甲醇 、 二氯甲烷 、 N,N-二甲基甲酰胺 、 甲苯 为溶剂， 反应 4.5h， 生成 N-(tert-butoxycarbonyl)-4[(4’;1’,1”)biphenyl]-L-phenylalanine methyl ester
  参考文献：
  名称：

  酪氨酸修饰的α4β7整联蛋白抑制剂生物素-R 8 ERY的酪氨酸修饰类似物的合成和生物学评价

  摘要：

  α4β7整联蛋白是针对各种炎症疾病（包括炎症性肠病，1型糖尿病和多发性硬化症）的药物开发的众所周知的靶标。据报道，基于肽生物素-R 8 ERY的细胞可渗透性β7整联蛋白抑制剂小文库的合成，其中酪氨酸残基已通过Suzuki-Miyaura交叉偶联反应进行了修饰。在细胞粘附测定中评估了合成的拟肽，并显示出其抑制了小鼠TK-1 T细胞与小鼠MAdCAM-1的Mn 2+活化粘附。所有合成的拟肽均比我们先前报道的含生物类似物6和7中的两个类似物的先导化合物生物素-R 8 ERY更具活性。，其IC 50值小于15μM。

  DOI：

  10.1016/j.bmc.2012.07.010

文献信息

• Detection of Dihydrofolate Reductase Conformational Change by FRET Using Two Fluorescent Amino Acids
  作者：Shengxi Chen、Nour Eddine Fahmi、Lin Wang、Chandrabali Bhattacharya、Stephen J. Benkovic、Sidney M. Hecht

  DOI：10.1021/ja403007r

  日期：2013.9.4

  Two fluorescent amino acids, including the novel fluorescent species 4-biphenyl-L-phenylalanine (1), have been incorporated at positions 17 and 115 of dihydrofolate reductase (DHFR) to enable a study of conformational changes associated with inhibitor binding. Unlike most studies involving fluorescently labeled proteins, the fluorophores were incorporated into the amino acid side chains, and both probes [1 and L-(7-hydroxycoumarin-4-yl)ethylglycine (2)] were smaller than fluorophores typically used for such studies. The DHFR positions were chosen as potentially useful for Forster resonance energy transfer (FRET) measurements on the basis of their estimated separation (17-18 angstrom) and the expected change in distance along the reaction coordinate. Also of interest was the steric accessibility of the two sites: Glu17 is on the surface of DHFR, while Ile115 is within a folded region of the protein. Modified DHFR I (1 at. position 17; 2 at position 115) and DHFR II (2 at position 17; 1 at position 115) were both catalytically competent. However, DHFR II containing the potentially rotatable biphenylphenylalanine moiety at sterically encumbered position 115 was significantly more active than DHFR I. Irradiation of the modified DHFRs at 280 nm effected excitation of 1, energy transfer to 2, and emission by 2 at 450 nm. However, the energy transfer was substantially more efficient in DHFR II. The effect of inhibitor binding was also measured. Trimethoprim mediated concentration-dependent diminution of the emission observed at 450 nm for DHFR II but not for DHFR I. These findings demonstrate that amino acids containing small fluorophores can be introduced into DHFR with minimal disruption of function and in a fashion that enables sensitive monitoring of changes in DHFR conformation.