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(2S,4R)‐4‐[18F]fluoroglutamine | 1262523-93-2

中文名称
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中文别名
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英文名称
(2S,4R)‐4‐[18F]fluoroglutamine
英文别名
[18F]FGln;(2S,4S)-2,5-diamino-4-(18F)fluoranyl-5-oxopentanoic acid
(2S,4R)‐4‐[<sup>18</sup>F]fluoroglutamine化学式
CAS
1262523-93-2
化学式
C5H9FN2O3
mdl
——
分子量
163.138
InChiKey
PGEYFCBAWGQSGT-DIXDPKRGSA-N
BEILSTEIN
——
EINECS
——
  • 物化性质
  • 计算性质
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计算性质

  • 辛醇/水分配系数(LogP):
    -3.7
  • 重原子数:
    11
  • 可旋转键数:
    4
  • 环数:
    0.0
  • sp3杂化的碳原子比例:
    0.6
  • 拓扑面积:
    106
  • 氢给体数:
    3
  • 氢受体数:
    5

反应信息

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文献信息

  • Synthesis of Optically Pure 4-Fluoro-Glutamines as Potential Metabolic Imaging Agents for Tumors
    作者:Wenchao Qu、Zhihao Zha、Karl Ploessl、Brian P. Lieberman、Lin Zhu、David R. Wise、Craig B. Thompson、Hank F. Kung
    DOI:10.1021/ja109203d
    日期:2011.2.2
    route to prepare all four stereoisomeric 4-fluoro-glutamines was developed by exploiting a Passerini three-component reaction. The skeleton of 4-substituted glutamine derivatives was efficiently constructed. Subsequent four-step reactions, highlighted by a "neutralized" TASF fluorination, provided the desired products with high yields and excellent optical purity. The optically pure fluorine-18 labeled
    通过利用 Passerini 三组分反应开发了一种用于制备所有四种立体异构 4--谷酰胺的通用合成路线。有效构建了 4-取代谷酰胺衍生物的骨架。随后的四步反应,以“中和”的 TASF 化为重点,提供了具有高产率和优异光学纯度的所需产物。使用 18-crown-6/KHCO(3) 或 K[222]/K(2)CO(3) 催化系统也成功地制备了光学纯 18 标记的 4-酰胺。使用 9L 肿瘤细胞和 SF188(Bcl-xL) 肿瘤细胞(一种源自胶质母细胞瘤的谷酰胺成瘾肿瘤)进行的初步细胞摄取和抑制研究为它们与正电子发射断层扫描 (PET) 结合用于体内成像的潜在应用提供了强有力的证据。肿瘤,
  • Initial experience in synthesis of (2S,4R)‐4‐[18F]fluoroglutamine for clinical application
    作者:Yan Zhang、Lifang Zhang、Jianhua Yang、Zehui Wu、Karl Ploessl、Zhihao Zha、Fei Liu、Xiaoxia Xu、Hua Zhu、Zhi Yang、Lin Zhu、Hank F. Kung
    DOI:10.1002/jlcr.3719
    日期:2019.5.15
    We report initial experience in synthesis of (2S,4R)‐4‐[18F]fluoroglutamine, [18F]FGln, which has been used as a tool for monitoring glutamine metabolism in cancer patients. [18F]FGln was prepared by a fully automated PET‐MF‐2V‐IT‐I synthesizer under GMP‐compliant conditions for routine clinical studies. The total radiosynthesis time was about 65 minutes, the decay‐corrected radiochemical yield was 18.0 ± 4.2% (n = 59; failure n = 15), and the radiochemical purity was greater than 90%. In some situations, the yields were low (less than 5%), and the most likely cause of this problem is the initial fluorination step; the fluoride ion might not have been fully activated. In other occasions, low final radiochemical purity was often associated with the failure of the second step—removal of protection groups by anhydrous trifluoroacetic acid. A trace amount of water led to production of undesired 4‐[18F]fluoroglutamic acid. Knowledge learned from the successes and failures of synthesis may be helpful to identify critical steps and pitfalls for preparation of this clinically useful metabolic probe, [18F]FGln, for imaging glutamine utilization in tumor of cancer patients.
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