reactions. The phosphorescence lifetime of the iridium(III) complex was quenched upon bis-labeling owing to the intracellular FRET to the rhodamine derivative, and significantly elongated upon the peptide was catalytically cleaved by caspase-3. Interestingly, the sensitivity and efficiency of the lifetime response were much higher in the "labeling after recognition" sensing approach. Molecular docking analysis
用发光能量供体/受体对在
生物底物上进行双标记,提供探针,提供 FRET 读数以检测相互作用伙伴。然而,共价结合的发光体带来空间位阻和非特异性相互作用,这可能会干扰
生物识别。在此,我们设计了一种高灵敏度和特异性的“识别后标记”传感方法,其中发光体标记发生在
生物识别之后。以切割酶 caspase-3 为例,我们使用四肽基序 Asp-Glu-Val-Asp DEVD 作为可切割底物,以及
铱 (III) 复合物和
罗丹明衍
生物作为能量供体/受体对。DEVD 四肽在
氨基和羧基末端分别用
叠氮化物和 GK-
降冰片烯基团修饰,这允许通过两个独立的无催化
生物正交反应进行供体/受体双标记。由于细胞内对
罗丹明衍
生物的 FRET,
铱 (III) 复合物的
磷光寿命在双标记时被淬灭,并在肽被 caspase-3 催化裂解后显着延长。有趣的是,在“识别后标记”传感方法中,寿命响应的灵敏度和效率要高得多。分子对接分析表明,空间位阻和非特异性相互作用部分抑制了